Skip to main content
LibreTexts - Ukrayinska

28.4: Перегородна хроматографія

  • Page ID
    27313
  • \( \newcommand{\vecs}[1]{\overset { \scriptstyle \rightharpoonup} {\mathbf{#1}} } \) \( \newcommand{\vecd}[1]{\overset{-\!-\!\rightharpoonup}{\vphantom{a}\smash {#1}}} \)\(\newcommand{\id}{\mathrm{id}}\) \( \newcommand{\Span}{\mathrm{span}}\) \( \newcommand{\kernel}{\mathrm{null}\,}\) \( \newcommand{\range}{\mathrm{range}\,}\) \( \newcommand{\RealPart}{\mathrm{Re}}\) \( \newcommand{\ImaginaryPart}{\mathrm{Im}}\) \( \newcommand{\Argument}{\mathrm{Arg}}\) \( \newcommand{\norm}[1]{\| #1 \|}\) \( \newcommand{\inner}[2]{\langle #1, #2 \rangle}\) \( \newcommand{\Span}{\mathrm{span}}\) \(\newcommand{\id}{\mathrm{id}}\) \( \newcommand{\Span}{\mathrm{span}}\) \( \newcommand{\kernel}{\mathrm{null}\,}\) \( \newcommand{\range}{\mathrm{range}\,}\) \( \newcommand{\RealPart}{\mathrm{Re}}\) \( \newcommand{\ImaginaryPart}{\mathrm{Im}}\) \( \newcommand{\Argument}{\mathrm{Arg}}\) \( \newcommand{\norm}[1]{\| #1 \|}\) \( \newcommand{\inner}[2]{\langle #1, #2 \rangle}\) \( \newcommand{\Span}{\mathrm{span}}\)

    З безлічі форм рідинної хроматографії найбільш поширена перегородкова хроматографія. У перегородковій хроматографії час утримання розчиненої речовини визначається тим, наскільки він рухається з рухомої фази в стаціонарну фазу, а від стаціонарної фази назад в рухливу фазу. Ступінь цього рівноважного поділу визначається полярністю розчинених речовин, стаціонарної фази та рухомої фази. У хроматографії з нормальною фазою, стаціонарна фаза є полярною, а рухома фаза неполярна (або низької полярності), причому більша кількість полярних розчинів займає більше часу, щоб елютувати, оскільки вони сильніше утримуються полярною стаціонарною фазою. У хроматографії зворотної фази перегородки стаціонарна фаза неполярна, а рухлива фаза - полярна, причому більше полярних розчинів елююють швидше, оскільки вони менш сильно утримуються стаціонарною фазою. З двох режимів більш поширена зворотно-фазова перегородкова хроматографія.

    Стаціонарні фази для розділової хроматографії

    У перегородковій хроматографії стаціонарна фаза являє собою рідку плівку, нанесену на пакувальний матеріал, як правило, 3-10 мкм пористих частинок кремнезему. Оскільки стаціонарна фаза може бути частково розчинна в рухомій фазі, вона може елютувати або кровоточити з колони з часом. Щоб запобігти втраті стаціонарної фази, яка скорочує термін служби колони, вона ковалентно пов'язана з частинками кремнезему. Зв'язані стаціонарні фази створюються шляхом взаємодії частинок кремнезему з органохлорсиланом загальної форми Si (CH 3) 2 rCl, де R - алкільна або заміщена алкільна група.

    Щоб запобігти небажаним взаємодіям між розчиненими речовинами та будь-якими іншими групами —SiOH, Si (CH 3) 3 Cl використовується для перетворення сайтів, які не реагували\(–\text{SiOSi(CH}_3)_3\); такі стовпці позначаються як кінцеві.

    Властивості стаціонарної фази залежать від алкільної групи органосилану. Якщо R - полярна функціональна група, то стаціонарна фаза - полярна. Приклади полярних стаціонарних фаз включають ті, де R містить ціано (—C 2 H 4 CN), діол (—C 3 H 6 OCH 2 CHOHCH 2 OH) або аміногенну (—C 3 H 6 NH 2) функціональну групу. Найбільш поширені неполярні стаціонарні фази використовують органохлорсилан, де група R - це вуглеводневий ланцюг n -октил (C 8) або n -октилдецил (С 18). Більшість розділень зворотної фази здійснюються з використанням буферного водного розчину як полярної рухомої фази або з використанням інших полярних розчинників, таких як метанол та ацетонітрил. Оскільки кремнеземний субстрат може піддаватися гідролізу в основних розчині, рН рухомої фази повинен бути менше 7,5.

    Здається дивним, що більш поширена форма рідинної хроматографії ідентифікується як зворотна фаза замість нормальної фази. Одним з найбільш ранніх прикладів хроматографії було поділ Михайла Цветта рослинних пігментів, який використовував полярний стовп карбонату кальцію і неполярну рухливу фазу петролейного ефіру. Отже, присвоєння нормального та зворотного значення - це все про пріоритет.

    Мобільні фази для перегородкової хроматографії

    Порядок елюції розчинених речовин у ВЕРХ регулюється полярністю. Для нормального поділу фаз розчинена речовина нижчої полярності витрачає пропорційно менше часу в полярній стаціонарній фазі і елюює перед більш полярним розчиненою речовиною. Враховуючи певну стаціонарну фазу, час утримання в нормальній фазі ВЕРХ контролюється регулюванням властивостей рухомої фази. Наприклад, якщо роздільна здатність між двома розчиненими речовинами бідна, перехід на менш полярну рухливу фазу зберігає розчинені речовини на колонці протягом більш тривалого часу і надає більше можливостей для їх поділу. У ВЕРХ із зворотною фазою порядок елюції протилежний, ніж при розділенні нормальної фази, при першому елююванні більшої кількості полярних розчинів. Збільшення полярності рухомої фази призводить до більш тривалого часу утримання. Більш короткі терміни утримання вимагають рухливої фази нижчої полярності.

    Вибір мобільної фази: використання індексу полярності

    Існує кілька індексів, які допомагають у виборі рухомої фази, одним з яких є індекс полярності [Снайдер, Л.Р.; Glajch, J. L.; Kirkland, J. Практична розробка методу ВЕРХ, Wiley-Inter- наука: Нью-Йорк, 1988]. Таблиця Template:index містить значення індексу полярності\(P^{\prime}\), для декількох поширених рухомих фаз, де більші значення\(P^{\prime}\) відповідають більшій кількості полярних розчинників. Змішування двох або більше мобільних фаз, припускаючи, що вони змішуються - створює рухливу фазу проміжної полярності. Наприклад, бінарна рухлива фаза, зроблена шляхом поєднання розчинника А і розчинника В, має індекс полярності\(P_{AB}^{\prime}\),

    \[P_{A B}^{\prime}=\Phi_{A} P_{A}^{\prime}+\Phi_{B} P_{B}^{\prime} \label{12.1} \]

    де\(P_A^{\prime}\) і\(P_B^{\prime}\) є показниками полярності для розчинників A і B,\(\Phi_A\) а\(\Phi_B\) також об'ємні частки для двох розчинників.

    Таблиця Template:index. Властивості мобільних фаз ВЕРХ
    рухлива фаза індекс полярності (\(P^{\prime}\)) УФ-відсічення (нм)
    циклогексан \ (P^ {\ прайм}\)) ">0.04 210
    n -гексан \ (P^ {\ прайм}\)) ">0.1 210
    чотирихлористий вуглець \ (P^ {\ прайм}\)) ">1.6 265
    i-пропіловий ефір \ (P^ {\ прайм}\)) ">2.4 220
    толуолу \ (P^ {\ прайм}\)) ">2.4 286
    діетиловий ефір \ (P^ {\ прайм}\)) ">2.8 218
    тетрагідрофуран \ (P^ {\ прайм}\)) ">4.0 220
    етанолу \ (P^ {\ прайм}\)) ">4.3 210
    етилацетат \ (P^ {\ прайм}\)) ">4.4 255
    діоксан \ (P^ {\ прайм}\)) ">4.8 215
    метанол \ (P^ {\ прайм}\)) ">5.1 210
    ацетонітрил \ (P^ {\ прайм}\)) ">5.8 190
    вода \ (P^ {\ прайм}\)) ">10.2
    Приклад Template:index

    Розділення ВЕРХ зворотної фази здійснюється за допомогою рухомої фази 60% в/в води і 40% в/в метанолу. Що таке індекс полярності рухомої фази?

    Рішення

    Використовуючи рівняння\ ref {12.1} та значення в таблиці Template:index, індекс полярності суміші вода-метанол 60:40 дорівнює

    \[P_{A B}^{\prime}=\Phi_\text{water} P_\text{water}^{\prime}+\Phi_\text{methanol} P_\text{methanol}^{\prime} \nonumber \]

    \[P_{A B}^{\prime}=0.60 \times 10.2+0.40 \times 5.1=8.2 \nonumber \]

    Вправа Template:index

    Припустимо, вам потрібна рухлива фаза з показником полярності 7,5. Поясніть, як можна підготувати цю рухливу фазу за допомогою метанолу та води.

    Відповідь

    Якщо ми дозволимо х бути часткою води в рухомій фазі, то 1 — х - частка метанолу. Підставляємо ці значення в рівняння\ ref {12.1} та розв'язуємо для x

    \[7.5=10.2 x+5.1(1-x) \nonumber \]

    \[7.5=10.2 x+5.1-5.1 x \nonumber \]

    \[2.4=5.1 x \nonumber \]

    дає х як 0,47. Рухливою фазою є 47% в/в води і 53% в/в метанолу.

    Як правило, двоодинична зміна індексу полярності відповідає приблизно 10-кратній зміні коефіцієнта утримання розчиненої речовини. Ось простий приклад. Якщо коефіцієнт утримання розчиненої речовини, k, становить 22 при використанні води в якості рухомої фази (\(P^{\prime}\)= 10,2), то перехід на рухливу фазу 60:40 вода-метанол (\(P^{\prime}\)= 8,2) зменшується до приблизно 2,2. Зверніть увагу, що коефіцієнт утримання стає меншим, оскільки ми переходимо від більш полярної рухомої фази до менш полярної рухомої фази при розділенні зворотної фази.

    Вибір мобільної фази: регулювання селективності

    Зміна індексу полярності мобільної фази змінює коефіцієнт утримання розчиненої речовини. Однак, як ми дізналися в розділі 26.4, зміна k не є ефективним способом покращення роздільної здатності, коли початкове значення k перевищує 10. Для кращого поділу між двома розчиненими речовинами ми повинні покращити коефіцієнт селективності\(\alpha\). Існує два загальних методу збільшення\(\alpha\): додавання в рухому фазу реагенту, який реагує з розчиненими речовинами в реакції вторинної рівноваги або перехід на іншу рухливу фазу.

    Скористатися реакцією вторинної рівноваги є корисною стратегією для поліпшення поділу [(a) Фолі, J.P. Хроматографія, 1987, 7, 118—128; (б) Фолі, J.P.; May, W.E. Anal. Хім. 1987, 59, 102—109; (с) Фолі, Дж. П.; Мей, В. Е. Хім. 1987, 59, 110—115]. На малюнку Template:index показано розділення чотирьох слабких кислот у зворотній фазі - бензойної кислоти, терефталевої кислоти, p -амінобензойної кислоти та р-гідроксибензойної кислоти - на неполярній колонці C 18, використовуючи водний буфер оцтової кислоти та ацетату натрію як рухому фазу. Час утримання цих слабких кислот коротший при використанні менш кислої рухомої фази, оскільки кожна розчинена речовина присутня в аніонній, слабкій формі основи, яка менш розчинна в неполярній стаціонарній фазі. Якщо рН рухливої фази досить кислий, розчинені речовини присутні у вигляді нейтральних слабких кислот, які більш розчинні в стаціонарній фазі і займають більше часу для елюції. Оскільки слабкі розчинені речовини кислоти не мають однакових значень p K a, рН рухомої фази по-різному впливає на час утримання кожного розчиненого речовини, що дозволяє нам знайти оптимальний рН для повного поділу чотирьох розчинених речовин.

    Рисунок Template:index. Приклад, що показує, як рН рухомої фази в рідинній хроматографії впливає на селективність: (а) час утримання чотирьох заміщених бензойних кислот як функція рН рухомої фази; (б) значення альфа для трьох пар розчинених речовин, які важко відокремити. Рухлива фаза - це буфер оцтової кислоти/ацетату натрію, а стаціонарна фаза - неполярний вуглеводень. Дані Харві, D.T.; Byerly, S; Bowman, A; Tomlin, J. «Оптимізація поділу ВЕРХ та GC за допомогою поверхонь відгуку», J. Chem. Едук. 1991, 68, 162—168.

    У прикладі Template:index ми навчилися регулювати полярність мобільної фази шляхом змішування двох розчинників. Індекс полярності, однак, є лише орієнтиром, і бінарні рухливі фазові суміші з однаковими показниками полярності можуть не однаково вирішити пару розчинених речовин. Наприклад, таблиця Template:index} показує час утримання чотирьох слабких кислот у двох рухомих фазах з майже однаковими значеннями для\(P^{\prime}\). Хоча порядок елюції однаковий для обох рухомих фаз, на час утримання кожного розчиненого речовини по-різному впливає вибір органічного розчинника. Якщо ми перейдемо від використання ацетонітрилу до тетрагідрофурану, наприклад, ми виявимо, що бензойна кислота елююється швидше і що р -гідроксибензойна кислота елююється повільніше. Хоча ми можемо повністю вирішити ці дві розчинні речовини, використовуючи рухливу фазу, яка становить 16% в/в ацетонітрилу, ми не можемо їх вирішити, якщо рухлива фаза становить 10% тетрагідрофурану.

    Таблиця Template:index. Час утримання чотирьох слабких кислот у мобільних фазах з аналогічними показниками полярності
    час утримання (хв)

    16% ацетонітрилу (СН 3 CN)

    84% рН 4,11 водний буфер (\(P^{\prime}\)= 9,5)

    10% тетрагідрофуран (THF)

    90% рН 4,11 водний буфер (\(P^{\prime}\)= 9,6)

    \(t_\text{r, BA}\) \ (P^ {\ прайм}\) = 9.5) ">5.18 \ (P^ {\ прайм}\) = 9.6) ">4.01
    \(t_\text{r, PH}\) \ (P^ {\ прайм}\) = 9.5) ">1.67 \ (P^ {\ прайм}\) = 9.6) ">2.91
    \(t_\text{r, PA}\) \ (P^ {\ прайм}\) = 9.5) ">1.21 \ (P^ {\ прайм}\) = 9.6) ">1.05
    \(t_\text{r, TP}\) \ (P^ {\ прайм}\) = 9.5) ">0.23 \ (P^ {\ прайм}\) = 9.6) ">0.54
    \ (Р^ {\ прайм}\) = 9.6)» клас = "lt-chem-362587">

    Ключ: BA - бензойна кислота; РН - р -гідроксибензойна кислота; ПА - р -амінобензойна кислота; TP - терефталева кислота
    Джерело: Харві, Д. Т.; Байерлі, С.; Боуман, А.; Томлін, Дж. «Оптимізація поділу ВЕРХ та ГК за допомогою поверхонь відповіді», J. Chem. Едук. 1991, 68, 162—168.

    Три точки трикутника - рухливі фази, що складаються з тетрагідрофурана і води. Сторони трикутника - це бінарні рухливі фази, створені шляхом об'єднання рівних обсягів метанолу/води і тетрагідрофуран/води. Центр трикутника містить всі три чисті рухливі фази і складається з рівних частин метанолу/води, ацетонітрилу/води та тетрагідрофуран/води.
    Рисунок Template:index. Трикутник розчинника для оптимізації розділення ВЕРХ із зворотною фазою. Три синіх кола показують рухливі фази, що складаються з органічного розчинника і води. Три червоні кола - це бінарні рухливі фази, створені шляхом об'єднання рівних обсягів чистих рухомих фаз. Потрійна рухлива фаза, показана фіолетовим колом, містить всі три чисто рухливі фази.

    Однією зі стратегій пошуку найкращої мобільної фази є використання трикутника розчинника, показаного на рисунку Template:index, що дозволяє досліджувати широкий спектр мобільних фаз лише за сім експериментів. Ми починаємо з регулювання кількості ацетонітрилу в рухомій фазі для отримання найкращого можливого поділу протягом бажаного часу аналізу. Далі ми використовуємо таблицю Template:index для оцінки складу рухливих фаз метанолу/H 2 O та тетрагідрофуран/H 2 O, які дадуть аналогічний час аналізу. Чотири додаткові мобільні фази готуються за допомогою бінарної та потрійної рухомих фаз, показаних на рисунку Template:index. Коли ми вивчаємо хроматограми з цих семи мобільних фаз, ми можемо виявити, що одна або кілька забезпечує адекватне поділ, або ми можемо визначити область всередині трикутника розчинника, де можливе поділ. Рисунок Template:index показує карту роздільної здатності для зворотної фази поділу бензойної кислоти, терефталевої кислоти, p -амінобензойної кислоти та p -гідроксибензойної кислоти на неполярній колонці C 18, в якій максимальний бажаний час аналізу встановлено 6 хв [Harvey, D.T.; Байерлі, С.; Боумен, А.; Томлін, Дж. Чем. Едук. 1991, 68, 162—168]. Області синього, зеленого та червоного кольорів показують рухомі фазові композиції, які не забезпечують базову роздільну здатність. Незатінена область являє собою рухомі фазові композиції, де можливе поділ.

    Вибір для початку з ацетонітрилу є довільним - ми можемо так само легко вибрати, щоб почати з метанолу або з тетрагідрофураном.

    Таблиця Template:index. Склад мобільних фаз з приблизно рівною силою розчинника
    % в/в СН 3 ОН % в/в СН 3 СН % в/в ТГФ
    0 0 0
    10 6 4
    20 14 10
    30 22 16
    40 32 24
    50 40 30
    6 50 36
    70 60 44
    80 72 52
    90 87 62
    100 99 71
    Рисунок Template:index. Карта роздільної здатності для поділу бензойної кислоти (BA), терефталевої кислоти (TP), р-амінобензойної кислоти (ПА) та р -гідроксибензойної кислоти (PH) на неполярній колонці С 18 за умови максимальний час аналізу 6 хв. Затінені ділянки представляють області, де поділ неможливий, з виявленими невирішеними розчиненими речовинами. Можливе поділ в незатіненій області. Див. Harvey, D.T.; Byerly, S; Боуман, А.; Томлін, J. «Оптимізація поділу ВЕРХ та GC за допомогою поверхонь відгуку», J. Chem. Едук. 1991, 68, 162—168 докладніше про математичну модель, яка використовується для створення карти роздільної здатності.

    Вибір мобільної фази: ізократичні та градієнтні елюції

    Поділ за допомогою рухливої фази, що має фіксований склад, - це і в сократичному елюції. Однією з труднощів з ізкратичним елююванням є те, що відповідна міцність рухомої фази для розчинення ранніх елюючих розчинів може призвести до неприпустимо тривалого часу утримання розчинених речовин, що запізнилися. З іншого боку, оптимізація рухомої фази для розчинів з пізнім елююванням може забезпечити недостатнє поділ розчинених речовин, що рано елютують. Зміна складу рухомої фази в міру прогресування поділу є одним з рішень цієї проблеми. Для розділення зворотної фази ми використовуємо початкову рухливу фазу, яка є більш полярною. У міру поділу ми коригуємо склад рухомої фази так, щоб вона стала менш полярною (див. Рисунок Template:index). Такі поділи називаються градієнтними елюціями.

    Рисунок Template:index. Градієнтне елюювання поділу суміші флавоноїдів. Рухлива фаза А являє собою водний розчин 0,1% мурашиної кислоти, а рухлива фаза В - 0,1% мурашиної кислоти в ацетонітрилі. Початкова рухома фаза становить 98% А і 2% В. Відсоток рухомої фази В збільшується в чотири етапи: від 2% до 5% протягом 5 хв, починаючи з 0,5 хв; від 5% до 12% протягом 1 хв, починаючи з 5,5 хв; від 12% до 25% протягом 15 хв, починаючи з 6,5 хв; і від 25% до 60% протягом 20 хв, починаючи з 21,5 хв. Дані надані Крістофером Шардоном, Кайлом Мейнхардтом та Мішель Буші, хімічний факультет Університету Трініті.

    Вибір детектора

    Наявність різних типів детекторів забезпечує ще один спосіб побудови селективності в аналіз. Наприклад, на малюнку Template:index} показано зворотно-фазове поділ суміші флавоноїдів за допомогою виявлення UV/Vis на двох різних довжині хвиль. У цьому випадку довжина хвилі 260 нм збільшує чутливість методу до рутину відносно таксифоліну.

    Рисунок Template:index. Виділення ВЕРХ суміші флавоноїдів з виявленням UV/Vis при 360 нм і, у вставці, при 260 нм. Вибір довжини хвилі впливає на сигнал кожного аналіта. Ретельно вибираючи довжину хвилі, ми можемо посилити сигнал для аналітів, що представляють найбільший інтерес. Дані надані Крістофером Шардоном, Кайлом Мейнхардтом та Мішель Буші, хімічний факультет Університету Трініті.

    Як показано на малюнку Template:index, флуоресцентний детектор забезпечує додаткову селективність, оскільки лише деякі компоненти зразка є флуоресцентними.

    Рисунок Template:index. Хроматограма ВЕРХ для визначення рибофлавіну в сечі за допомогою флуоресцентної детекції з збудженням на довжині хвилі 340 нм і детекцією при 450 нм. Пік, відповідний рибофлавіну, відзначається червоною зірочкою (*). Вставка показує ту ж хроматограму при використанні менш селективного UV/Vis детектора на довжині хвилі 450 нм. Дані, надані Джейсоном Шульцем, Джонною Беррі, Кейлін Лундстром та Дуайтом Столлом, кафедрою хімії, коледж Густавуса Адольфуса.

    З мас-спектрометром в якості детектора існує кілька варіантів моніторингу хроматограми. Найпоширенішим методом є безперервне сканування всього масового спектру та повідомлення про загальний сигнал для всіх іонів, що досягають детектора під час кожного сканування. Це загальне іонне сканування забезпечує універсальне виявлення для всіх аналітів. Як видно на малюнку Template:index, ми можемо досягти певної міри селективності, контролюючи лише конкретні співвідношення маси до заряду, процес, який називається селективно-іонним моніторингом.

    Рисунок Template:index. HPLC-MS/MS хроматограма для визначення рибофлавіну в сечі. Початковий батьківський іон зі співвідношенням m/z 377 надходить на другий мас-спектрометр, де піддається додатковій іонізації 20; іон фрагмента зі співвідношенням m/z 243 забезпечує сигнал. Вибірковість цього детектора очевидна, коли ви порівнюєте цю хроматограму з такою на малюнку Template:index, яка використовує флуоресцентне визначення. Дані, надані Джейсоном Шульцем, Джонною Беррі, Кейлін Лундстром та Дуайтом Столлом, кафедрою хімії, коледж Густавуса Адольфуса.

    Кількісне застосування перегородкової хроматографії

    Роздільна хроматографія зазвичай використовується як для якісного, так і кількісного аналізу екологічних, фармацевтичних, промислових, криміналістичних, клінічних та споживчих зразків продукції.

    Підготовка зразків до аналізу

    Зразки в рідкій формі вводять у ВЕРХ після відповідного очищення для видалення будь-яких твердих частинок або після відповідної екстракції для видалення матричних перешкод. При визначенні поліароматичних вуглеводнів (ПАГ) у стічних водах, наприклад, екстракція з CH 2 Cl 2 служить подвійному призначенню концентрування аналітів і виділення їх від матричних втручань. Тверді зразки спочатку розчиняють у відповідному розчиннику або аналітах, що представляють інтерес, вносяться в розчин шляхом екстракції. Наприклад, аналіз ВЕРХ для активних інгредієнтів та продуктів розпаду у фармацевтичній таблетці часто починається з вилучення порошкоподібної таблетки з частиною рухомої фази. Зразки газу збирають шляхом барботирования їх через пастку, яка містить відповідний розчинник. Органічні ізоціанати в промислових атмосферах збирають шляхом барботирования повітря через розчин 1- (2-метоксифеніл) піперазину в толуолі. Реакція між ізоціанатами та 1- (2-метоксифеніл) піперазином стабілізує їх проти деградації перед аналізом ВЕРХ і перетворює їх у хімічну форму, яку можна контролювати за допомогою поглинання УФ.

    Кількісні розрахунки

    Кількісний аналіз ВЕРХ часто простіший, ніж кількісний аналіз ГХ, оскільки петля зразка фіксованого обсягу забезпечує більш точну та точну ін'єкцію. Як результат, більшість кількісних методів ВЕРХ не потребують внутрішнього стандарту і замість цього використовують зовнішні стандарти і нормальну калібрувальну криву.

    Внутрішній стандарт необхідний при використанні HPLC-MS, оскільки інтерфейс між ВЕРХ та мас-спектрометром не дозволяє відтворювати передачу елюенту колонки в іонізаційну камеру MS.

    Приклад Template:index

    Концентрацію поліядерних ароматичних вуглеводнів (ПАГ) у ґрунті визначають шляхом першого вилучення ПАУ метиленхлоридом. Екстракт розбавляється, якщо це необхідно, і ПАУ відокремлюють за допомогою ВЕРХ за допомогою УФ/ВІС або флуоресцентного детектора. Калібрування досягається за допомогою одного або декількох зовнішніх стандартів. У типовому аналізі 2,013-г зразка висушеного ґрунту екстрагують 20,00 мл хлориду метилену. Після фільтрування для видалення грунту видаляють 1,00-мл порцію екстракту і розводять до 10,00 мл ацетонітрилом. Введення 5 мкл розведеного екстракту в ВЕРХ дає сигнал 0,217 (довільні одиниці) для фторантену ПАГ. Коли 5 мкл стандарту фторантену 20,0-ppm аналізується з використанням тих же умов, вимірюється сигнал 0,258. Повідомити частини на мільйон фторантену в грунті.

    Рішення

    Для одноточкового зовнішнього стандарту взаємозв'язок між сигналом, S, і концентрацією, С, флуорантену становить

    \[S = kC \nonumber \]

    Підстановка в значеннях сигналу і концентрації стандарту дає значення k як

    \[k=\frac{S}{C}=\frac{0.258}{20.0 \text{ ppm}}=0.0129 \text{ ppm}^{-1} \nonumber \]

    Використовуючи це значення для k та сигналу ВЕРХ зразка, дає концентрацію фторантену

    \[C=\frac{S}{k}=\frac{0.217}{0.0129 \text{ ppm}^{-1}}=16.8 \text{ ppm} \nonumber \]

    для витягнутого і розведеного зразка грунту. Концентрація фторантену в грунті становить

    \[\frac{16.8 \text{ g} / \mathrm{mL} \times \frac{10.00 \text{ mL}}{1.00 \text{ mL}} \times 20.00 \text{ mL}}{2.013 \text{ g} \text { sample }}=1670 \text{ ppm} \text { fluoranthene } \nonumber \]

    Вправа Template:index

    Концентрацію кофеїну в напоях визначають шляхом зворотно-фазового поділу ВЕРХ з використанням рухомої фази 20% ацетонітрилу і 80% води, і за допомогою неполярної колонки С 8. Результати для серії 10-мкл ін'єкцій стандартів кофеїну наведені в наступній таблиці.

    [Кофеїн] (мг/л) пікова площа (арб. одиниць)
    50.0 226724
    100.0 453762
    125.0 559443
    250.0 1093637

    Яка концентрація кофеїну в зразку, якщо ін'єкція 10-мкл дає пікову площу 424195? Дані в цій проблемі походять від Kusch, P.; Knupp, G. «Одночасне визначення кофеїну в напоях Cola та інших напоях за допомогою реверсивної фази HPTLC та ВЕРХ зворотної фази», Chem. Педагог, 2003, 8, 201—205.

    Відповідь

    На малюнку нижче показана калібрувальна крива і рівняння калібрування для набору зовнішніх стандартів. Заміна пікової площі зразка в калібрувальне рівняння дає концентрацію кофеїну в зразку 94,4 мг/л.

    Графік показує кофеїн (мг/л) проти пікової площі (арб. одиниць). Пікова площа = 16715+4318C (каф).